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SDS-PAGE電泳標(biāo)準(zhǔn)操作流程介紹

3.程序: 
3.1. 制膠 
3.1.1組裝膠架   將潔凈、無(wú)水的玻片對(duì)齊,形成空腔,插入塑料框的凹槽中,注意箭頭向上,并確保下
端平齊。放于制膠架上夾緊,下端緊貼密封條。 
3.1.2 分離膠的配置     
3.1.2.1  10%分離膠配方如下表:

3.1.2.2 灌膠  混勻后用移液槍將凝膠溶液沿玻棒小心注入到長(zhǎng)、短玻璃板間的狹縫內(nèi)(膠高度距樣品模板
梳齒下緣約1cm)。  
3.1.2.3液封  在凝膠表面沿短玻板邊緣輕輕加一層水以隔絕空氣,使膠面平整。靜置約30min觀察膠面
變化,當(dāng)看到水與凝固的膠面有折射率不同的界限時(shí),表明膠已完全凝固,倒掉上層水,并用濾紙吸干殘留的水液。 
3.1.3濃縮膠的配置   
3.1.3.1  5%濃縮膠配方下表:

3.1.3.2插入制膠梳  
混勻后用移液槍將凝膠溶液注入到長(zhǎng)、短玻璃板間的狹縫內(nèi)(分離膠上方),輕輕加入樣品模板梳,小心避免氣泡的出現(xiàn)。約30分鐘,聚合完全。 3.2. 電泳 
3.2.1 安裝電泳槽  將制備好的凝膠板取下,小心拔下梳子。兩塊10%的凝膠板分別插到U形橡膠框的兩邊凹
形槽中,可往上提起使凝膠板緊貼橡膠。將裝好玻璃板的膠??蚱椒旁谘龇诺馁A槽框上,其下緣與貯槽框下緣對(duì)齊,放入電泳槽內(nèi)。倒入1X tris-gly電泳緩沖液。 
3.2.2  樣品處理  對(duì)于蛋白樣品直接取80µl的樣品,依次加上20µl  5x buffer (加了B-巰基乙醇),混勻。
對(duì)于菌體或組織等固體樣品,取少量樣品加100ul 2x buffer (加了B-巰基乙醇)煮沸10分鐘。 
3.2.3  加樣    用移液槍取處理過(guò)的樣品溶液10μl,小心地依次加入到各凝膠凹形樣品槽內(nèi),marker 加
入到其中一個(gè)槽內(nèi),為區(qū)別兩塊板,marker可加在不同的孔槽中。 
3.2.4 電泳  將電泳槽放置電泳儀上,接通電源,正負(fù)極對(duì)好。電壓調(diào)**約150v保持恒壓。待溴酚藍(lán)標(biāo)記移動(dòng)到凝膠底部時(shí),關(guān)電源,把電泳緩沖液倒回瓶中。 
3.2.5剝離膠  把電泳槽取出,兩塊板拿下來(lái),用刮片從長(zhǎng)短玻片中間翹起,再把濃縮膠刮掉,取下。 
3.3. 染色放于加有R250染色液的染色皿中,染液漫過(guò)膠即可,置于搖床上,轉(zhuǎn)速約為45r/min,時(shí)間約1小時(shí),
完成后染液倒掉并用水洗掉染液。 
3.4.脫色取出染色過(guò)的膠放于加有脫色液的染缸里,脫色液漫過(guò)膠即可,置于搖床上,轉(zhuǎn)速約為45r/min,時(shí)間約1小時(shí),本底色脫凈,條帶清晰可見(jiàn)即可,完成后倒掉脫色液。 
3.5.拍照  將脫色后的膠置于透明文件夾中,把膠上面的氣泡趕出(用前也可用酒精棉球擦干凈文件夾),放到
掃描儀上,拍照。 
4. 注意事項(xiàng) 
4.1  根據(jù)目的蛋白的大小選擇合適的膠片濃度。一般為100KD-50KD選用10%膠;50KD-30KD選用12%膠;
30KD-10KD選用15%膠。4.2  要根據(jù)樣品濃度來(lái)加樣品溶解液。每加一個(gè)樣品后換一支吸頭或清洗吸頭后再點(diǎn)另一個(gè)樣品。4.3  制備聚丙烯酰胺凝膠時(shí),倒膠后常漏出膠液,那是因?yàn)槎K玻璃板與塑料條之間沒(méi)封緊,留有空隙,所以這步要特別留心操作.4.4  電泳完畢撬板取凝膠時(shí)要小心細(xì)致不能把膠弄破。 4.5  電泳緩沖液可重復(fù)利用,如果膠上出現(xiàn)不正常痕跡,就要及時(shí)更換新液。4.6  分離膠高度控制得當(dāng),確保有大約1cm左右的濃縮膠空間。過(guò)長(zhǎng)或過(guò)短均不能得到理想的電泳結(jié)果。4.7  電泳染色液注意進(jìn)行回收再利用,一般可重復(fù)使用2-3次。4.8 AP和TEMED是催化劑,加入的量要合適,過(guò)少則凝膠聚合很慢甚**不聚合,過(guò)多則聚合過(guò)快,影響倒膠。
操作步驟: 
采用垂直式電泳槽裝置 1、 安裝電泳槽 
2、 配制分離膠(12%)(10ml): 

將分離膠上的水倒去,并用濾紙吸干多余水份,加入上述混合液,立即將梳子插入玻璃板間,完全聚合需15-30min。 4、待積層膠完全聚合后,小心拔出梳子,然后將玻璃板固定在電泳槽上。 
5、樣品處理:將樣品加入等量的2×SDS上樣緩沖液,100℃加熱3-5min, 12000g離心1min,取上清作SDS-PAGE分析,同時(shí)將SDS低分子量蛋白質(zhì)Marker作平行處理。 
6、上樣:取10μl誘導(dǎo)與未誘導(dǎo)的處理后的樣品加入樣品池中,并加入20μl低分子量蛋白Marker作對(duì)照。 
7、電泳:在電泳槽中加入1?電泳緩沖液,連接電源,電泳時(shí),積層膠電壓80V,分離膠電壓120V,電泳**溴酚藍(lán)行**電泳槽下端停止(約需2-3h)。 
8、染色:將膠從玻璃板中取出,置于考馬斯亮藍(lán)染色液中染色,室溫4-6h。 9、脫色:將膠從染色液中取出,放入脫色液中,多次脫色**蛋白帶清晰。 #p#分頁(yè)標(biāo)題#e#
10、凝膠攝像和保存:將脫色好的凝膠攝像,凝膠可保存于雙蒸水中或7%乙酸溶液中。 注意事項(xiàng): 
1、實(shí)驗(yàn)組與對(duì)照組所加總蛋白含量要相等。 
2、為達(dá)到較好的凝膠聚合效果,緩沖液的pH值要準(zhǔn)確,10%AP在一周內(nèi)使用。室溫較低時(shí),TEMED的量可加倍。 3、未聚合的丙烯酰胺和亞甲雙丙烯酰胺具有神經(jīng)毒性,可通過(guò)皮膚和呼吸道吸收,應(yīng)注意防護(hù)。 試劑配制: 
? 30%丙烯酰胺(29:1)配制:稱取Acrylamide 29 g、Bisacrylamide 1 g,加入約60 ml的去離子水,充分?jǐn)嚢枞?/div>
解。加去離子水將溶液定容**100 mL,用0.45um濾膜濾去雜質(zhì),于中4℃避光保存。 ? 5×Tris-Glycine電泳緩沖液的配制:稱取Tris-base 15.1 g、Glycine 94 g、SDS 5 g置于1 L燒杯中,加入約800 
mL的去離子水,攪拌溶解;加去離子水將溶液定容**1 L后,室溫保存。 
? 10 %過(guò)硫酸胺(AP)的配制:稱取過(guò)硫酸胺0.1 g 溶于1.0 mL 滅菌的去離子水中,充分混勻后于4 ℃避光保
存,保存時(shí)間不能超過(guò)1周。  
? 10 % SDS的配制:稱取SDS 10 g溶于100 mL滅菌的去離子水中并于50℃水浴下溶解,室溫保存。如在長(zhǎng)
期保存中出現(xiàn)沉淀,水浴溶化后,仍可使用。  
? 1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8):稱取Tris-base 45.43 g,加入約200 mL去離子水,攪拌溶解;用濃鹽酸調(diào)pH**
8.8,**后用去離子水定容**250 mL,室溫下保存。  
? 0.5mol/L Tris-HCl(pH6.8):稱取Tris-base 15.14 g,加入約200 mL去離子水,攪拌溶解;用濃鹽酸調(diào)pH**
6.8,**后用去離子水定容**250 mL,室溫下保存。  
? 12 % SDS-PAGE 分離膠:30%丙烯酰胺4 mL、去離子水3.3 mL、1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8)2.5 mL、10 % AP 
100 μL、10 % SDS 100 μL和TEMED 5 μL充分混勻后灌膠。 
? 15 % SDS-PAGE 分離膠:30%丙烯酰胺5 mL、去離子水2.3 mL、1.5mol/L Tris-HCl(pH8.8)2.5 mL、10 % AP 
100 μL、10 % SDS 100 μL和TEMED 5 μL充分混勻后灌膠。 
? 5 % SDS-PAGE 濃膠:30%丙烯酰胺0.5 mL、去離子水2.1 mL、0.5mol/L Tris-HCl(pH6.8)0.375 mL、10 % AP 
30 μL、10 % SDS 30 μL和TEMED 5 μL充分混勻后灌膠。 
? 考馬斯亮藍(lán)染色液的配制:稱取1 g考馬斯亮藍(lán)R-250,置于1 L燒杯中;量取250 mL異丙醇加入上述燒杯
中,攪拌溶解;加入100 mL的冰醋酸,攪拌均勻;加入650 mL去離子水,攪拌均勻;用濾紙除去顆粒物質(zhì)后,室溫保存?zhèn)溆谩?nbsp;
? 脫色液的配制:量取冰醋酸 100 mL、乙醇50 mL,加去離子水定溶**1L,攪拌均勻,室溫保存?zhèn)溆谩?nbsp;
 
? 轉(zhuǎn)移緩沖液的配制:稱取Tris-base 1.45 g、甘氨酸7.2 g,加入約200 mL去離子水,攪拌溶解;加入100 mL
甲醇,**后用去離子水定容**500 mL,室溫下保存?zhèn)溆谩? 
? 洗膜緩沖液(TBST)的配制:稱取NaCl 8.8 g、Tris-base 2.42 g,向燒杯中加入約800 mL去離子水,充分?jǐn)嚢?/div>
溶解;用1 M HCl將溶液的pH值調(diào)**7.5,加入0.5 mL Tween 20后充分混勻;加去離子水將溶液定容**1 L后,于4 ℃保存?zhèn)溆谩?nbsp;
? 封閉緩沖液的配制:稱取0.5 g脫脂奶粉溶于10 mL TBST緩沖液中,充分混勻后備用。 
0.1 M 甘氨酸緩沖液配制:稱取0.75 g甘氨酸加入90 mL去離子水,充分溶解后用pH計(jì)將pH值調(diào)**2.5,用去離子水定容**100mL后用0.22 µm 微孔慮膜過(guò)濾除菌后,將其分裝并于4 ℃保存?zhèn)溆谩?nbsp;
? 1 M Tris-HCl 緩沖液的配制:稱取12.1g Tris-base,加入90 mL去離子水,充分溶解后用pH計(jì)將pH值調(diào)**
7.5,用去離子水定容**100mL備用。 ? 銀染固定液:30 % 的乙醇,10%的乙酸。 
? 銀染氧化液:稱取0.7 g高碘酸溶于100 mL去離子水,充分混勻備用。  ? 銀染顯色液:濃度為0.005 g/L的檸檬酸,0.02 %的甲醛。 
? 銀氨溶液:濃度為0.67 % 的硝酸銀,0.33 %的氨水,0.8 g/L的NaOH。

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